BAKTERI ASAM LAKTAT DARI PEDA, BEKASAM, TERASI DAN RUSIP PENGHAMBAT Morganella morganii (PEMBENTUK HISTAMIN)

RINTO

Dipublikasikan dalam Jurnal Penelitian Pertanian Terapan V. 11 No. 2 Mei 2011. Politeknik Negeri Lampung

Abstract

The aim of this research is find out the lactic acid bacteria (LAB) from peda, bekasam, terasi and rusip which had antagonis by Morganella morganii (histamin producer bacteria). The result was that the number isolate from peda was 3 (1P₁ 10⁴, 3P₁ 10⁴, 2P₂ 10⁴), bekasam was 7 (1B₁ 10⁴, 2B₁10⁴, 1B₂10⁴, 2B₂10⁴, 3B₂ 10⁴, 1B₁ 10⁵, 2B₁10⁵), terasi was 4 (1T₁ 10⁴, 2T₁ 10⁴, 3T₁ 10⁴) and rusip was 5 isolates (1R₁10³, 2R₁10³, 3R₁10^3, 1R₁10⁴, 1R₂10⁴). All the isolates was bacill, gram positive, and negative catalase. The isolate which had biggest of clear zone was 3B₁10⁴  and 1T₁¹10⁴, with the diameter of clear zone was 1.725 cm and 1.300 cm.

Key word: Antagonis, Lactic acid bacteria, Morganella morganii

I.  PENDAHULUAN

A. Latar Belaklang

Proses kemunduran mutu pada ikan-ikan scombroid  biasanya diiringi dengan terbentuknya biogenik amin seperti histamin yang bersifat racun bagi manusia. Histamin merupakan biogenik amin berbahaya bagi kesehatan yang menyebabkan keracunan scombroid. (US FDA, 2001). Sebagian besar histamin terbentuk pada ikan-ikan golongan scombroidae yaitu tuna, tongkol, tenggiri dan kembung. Banyaknya kandungan histidin bebas pada golongan ikan scombroidae yang lebih dari 500mg/100g daging ikan (Kime et al. 2002) serta aktivitas dekarboksilasi histidin oleh bakteri-bakteri pembusuk merupakan faktor penentu terbentuknya histamin pada ikan segar. (Rodriguez-Jerez, et al. 1994).

Morganella morganii sebagai bakteri yang diindikasikan paling besar membentuk histamin pada ikan golongan scombroidae juga mempunyai kemampuan pembentukan histamin yang berbeda pada berbagai jenis ikan.  Pada ikan mackerel, Morganella morganii merupakan bakteri yang membentuk histamin terbanyak dengan berbagai perlakuan variasi suhu (Kim et al., 2002).  Pada suhu 25 sampai 37­^oC proses pembentukan histamin oleh Morganella morganii berlangsung sangat cepat. Hal ini seiring dengan pertumbuhan bakteri yang juga optimal pada suhu tersebut. Sedangkan pada suhu 15^oC pembentukan histamin mulai terhambat, pada suhu di bawah 4^oC histamin masih terbentuk namun tidak lebih dari 8mg/100g daging ikan (Kim et al., 2002).

Beberapa bakteri asam laktat diketahui mampu menjadi biokontrol untuk meningkatkan kualitas bahan pangan (Rahayu, 2003). Pediococcus acidilactici F-11 diketahui dapat menghambat pembentukan histamin oleh bakteri selama fermentasi peda (Rinto, 2006). Josten dan Nunez (1996) melaporkan bahwa Lactococcus lactis menghasilkan bakteriosin (nisin) yang dapat menghambat pertumbuhan bakteri pembentukan histamin seperti Lactobacillus buchneri dan Lactobacillus  brevis. Lactococcus lactis merupakan bakteri asam laktat yang berperan dalam proses fermentasi, oleh karena itu dalam penelitian ini dilakukan isolasi bakteri asam laktat dari produk fermentasi seperti  peda, bekasam, terasi dan rusip yang berpotensi menghambat Morganella morganii sebagai bakteri pembentuk histamin.  

II.   METODE PENELITIAN

A. Bahan dan Alat

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah sampel peda, bekasam, terasi, dan rusip, media de Man Rogosa Sharpe Agar (MRS) (Oxoid), Nutrient broth (NB) (Oxoid), Nutrient Agar (NA) (Oxoid), CaCO₃,  NaCL 0,85%, aquades, susu skim, dan gliserol. Sedangkan peralatan yang digunakan adalah autoclave, inkubator,  mikropipet volumetrik, tabung reaksi dan cawan petri.

B. Cara Kerja

1.      Isolasi Bakteri Asam Laktat

Isolasi bakteri asam laktat dilakukan dengan tahapan sebagai berikut: Sampel (peda, bekasam, terasi, dan rusip) sebanyak 50gram ditambahkan  dengan aquades steril sebanyak  250mL. Kemudian dihomogenisasi menggunakan stomacer. Isolat bakteri asam laktat yang diduga ada pada peda, bekasam, terasi, dan rusip ditumbuhkan pada media MRS+CaCO_3. Bakteri asam laktat yang tumbuh pada media MRS+CaCO₃ akan membentuk koloni dengan zona jernih disekitar koloni. Koloni yang ada, dimurnikan dengan metode goresan pada media MRS. Satu koloni yang diperkirakan murni, dikembangbiakan pada media agar miring untuk penyimpanan. Sebelum dilakukan pengujian antagonis terhadap bakteri pembusuk dan patogen, isolat yang ada diperiksa kemurniaanya dengan melihat keseragaman bentuk sel (batang, bulat, koma) pada mikroskup, dilakukan uji pewarnaan gram dan uji katalase bakteri. Hal ini diperuntukan agar benar-benar diperoleh bakteri asam laktat.

2.      Uji Antagonis (penghambatan) BAL terhadap Morganella morganii

Uji penghambatan dilakukan dengan mengikuti metode sumuran (well diffusion agar) yang dikembangkan Biswas, et al. (1991). Tahapan-tahapan dalam penelitian ini yaitu BAL hasil seleksi diambil sebanyak 1 ose dan ditumbuhkan pada media MRS cair (5ml) kemudian diinkubasi pada 30-37^oC selama 16-24 jam.  Pengujian dimulai dengan menuangkan 10ml medium NA lunak yang telah diinokulasikan dengan bakteri penghasil pembusuk sebanyak 1ml dari kultur murni dan disimpan dalam refrigerator selama 1 jam, dibiarkan memadat. Setelah 1 jam, suspensi BAL yang telah dipersiapkan sebelumya diambil sebanyak 25ml dan diteteskan pada sumuran, selanjutnya diinkubasi pada 36^oC selama 18-24 jam. Bakteri asam laktat yang menghasilkan zona jernih dipilih.  Penghambatan BAL ditunjukan oleh zona jernih yang terbentuk pada media uji antagonis.

3.      Uji pola pertumbuhan BAL pada suhu ruang dan suhu kamar

Tahap penelitian uji pola pertumbuhan adalah sebagai berikut: bakteri asam laktat yang mampu menghambat bakteri pembentuk histamin ditumbuhkan pada media MRS cair dan disimpan dalam suhu dingin (0-5) ^oC dan suhu ruang (25-30)^oC. Pola pertumbuhan sel ditentukan dengan menghitung koloni yang tumbuh pada media MRS padat (Total Plate count) setiap 3 jam selama 24 jam.

C.    Analisis Data

Hasil penelitian dianalisi secara deskriptif sehingga dapat dijelaskan/digambarkan berbagai isolat bakteri asam laktat yang mempunyai daya penghambatan terhadap bakteri pembentuk histamin.

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

A. Isolasi Bakteri Asam Laktat (BAL)

Media MRS+CaCO₃ merupakan media selektif bagi bakteri asam laktat. Bakteri asam laktat yang tumbuh pada media MRS-CaCO₃ ditunjukkan oleh koloni dengan zona jernih disekitar koloninya, ini menunjukan terbentuknya asam laktat oleh bakteri tersebut. Dari sekian banyak isolat bakteri asam laktat yang tumbuh, beberapa koloni yang memiliki perbedaan bentuk dipilih untuk uji selanjutnya. Pada peda terdapat  3 isolat (1P₁ 10⁴, 3P₁ 10⁴, 2P₂ 10⁴), bekasam 7 isolat 1B₁ 10⁴, 2B₁10⁴, 1B₂10⁴, 2B₂10⁴, 3B₂ 10⁴, 1B₁ 10⁵, 2B₁10⁵), Terasi 4 isolat (1T₁ 10⁴, 2T₁ 10⁴, 3T₁ 10⁴) dan rusip 5 isolat (1R₁10³, 2R₁10³, 3R₁10^3, 1R₁10⁴, 1R₂10⁴). Pemurnian dilakukan terhadap 19 isolat terpilih dengan menggunakan media MRS agar. Metode yang digunakan adalah  metode streak quadrant.  (Atlas, 2001).

B. Uji Penguat Dugaan Bakteri Asam Laktat

Uji penguat dugaan bakteri asam laktat digunakan untuk menentukan apakah bakteri dari  isolat terpilih termasuk golongan bakteri asam laktat atau tidak, yaitu meliputi pewarnaan gram, morfologi koloni bakteri dan uji katalase. Hasil uji menunjukan bahwa ke-19 isolat berbentuk batang, gram (+) dan katalase negatif, sehingga disimpulkan bahwa semua isolat termasuk bakteri asam laktat.

C. Uji Antagonis BAL terhadap Bakteri Pembentuk Histamin

Morganella morganii merupakan bakteri pembentuk histamin terbesar dan terbanyak di ikan-ikan scombroid. Adanya zona hambat (clear zone) yang dibentuk oleh bakteri asam laktat di sekitar sumuran menunjukan adanya penghambatan pertumbuhan BAL terhadap bakteri pembentuk histamine. Kemampuan penghambatan BAL terhadap bakteri pembentuk histamine (Morganella morganii) dapat dilihat pada table berikut ini.

Tabel 1. Diameter zona hambat BAL dari peda dan bekasam terhadap Morganella morganii

No	BAL	Zona hambat	No	BAL	Zona hambat
1	1P1 104	Tidak menghambat	11	1T1104	1,3
2	2P1 104	Tidak menghambat	12	2T1104	Tidak menghambat
3	3P1 104	Tidak menghambat	13	3T1104	Tidak menghambat
4	1P2 104	Tidak menghambat	14	1T2104	Tidak menghambat
5	2P2 104	Tidak menghambat	15	1R1103	Tidak menghambat
6	3P2 104	Tidak menghambat	16	2R1103	Tidak menghambat
7	1B1 104	1,225	17	3R1103	Tidak menghambat
8	2 B1104	Tidak menghambat	18	1R1104	Tidak menghambat
9	3B1 104w	1,725	19	1R2104	Tidak menghambat
10	1B2104	Tidak menghambat

Ket : *  = diameter sumuran yaitu 0,7 cm   

w   = isolat terbaik (3B₁ 10⁴)

Hasil uji antagonis menunjukkan bahwa dari 19 isolat bakteri asam laktat, terdapat 3 isolat yang yang menghasilkan zona hambat yaitu  isolat 2B₁10⁴, 3B₁10⁴ dan 1T₁10⁴. Berdasarka zona hambatnya, isolat terbaik adalah isolat 3B₁10⁴ 

D. Pola Pertumbuhan BAL

Dari Gambar 2,  menunjukan bahwa pola pertumbuhan BAL pada isolat 3B110⁴ untuk suhu ruang (30^oC) dan suhu dingin (5 ^oC) sama yaitu pada jam ke-0 sampai jam ke-3 terjadi fase lag (fase adaptasi bakteri terhadap lingkungan baru dan bakteri belum berkembangbiak), setelah jam ke-3 sampai jam ke-12 merupakan fase eksponensial, setelah jam ke-12 populasi bakteri mencapai maksimum sampai jam ke-15 merupakan fase stasioner dan setelah jam ke- 15 sampai jam ke-24 mengalami fase kematian.

Dari hasil pengamatan dapat dilihat,  3B110⁴ pada penyimpanan suhu dingin (5 ^oC) menunjukan jumlah populasi bakteri yang sedikit dibandingkan dengan penyimpanan suhu ruang (30 ^oC).  Pertumbuhan BAL 2B110⁴ pada suhu ruang (30 ⁰C)  lebih cepat  yaitu terjadi pada jam ke-12 bila dibandingkan dengan suhu dingin (5 ⁰C) pada isolat yang sama, dan isolat B110⁴  pada suhu dingin dan ruang yaitu pada jam ke-15. Namun, isolat tersebut masih dapat tumbuh sehingga dapat dimungkinkan  isolat 3B110⁴ yang terpilih bisa digunakan untuk penghambatan bakteri  pembentuk histamin selama proses produksi dan penyimpanan ikan segar.

       V. KESIMPULAN

            Dari penelitian yang telah dilakukan dapat ditarik beberapa kesimpulan sebagai berikut:

1.      Isolat BAL 3B₁10⁴   merupakan bakteri asam laktat yang mempunyai kemampuan penghamabtan terbesar terhadap bateri pembentuk histamin (Morganella morganii).

2.      Pertumbuhan optimum 3B₁ 10⁴ terjadi pada kondisi suhu ruang (30°C).

DAFTAR PUSTAKA

Atlas, R.M. 2001. Principle of Microbiology. Second Edition. Wm.C. Brown Publisher.

Biswas, S.R., P. Ray, M.C. Johnson, dan B. Ray. 1991. Influence of Growth Ccondition on the Production of a Bacteriocin, Pediocin AcH, by Pediococcus acidilactici H. Appl. Environ. Microbiol. 57(4): 1265-1267.

Josten, H.M.L. dan M. Nunez. 1996. Prevention of Histamine Formation in Cheese by Bacteriocin-Producing Lactic Acid Bacteria. Appl. Envir. Micro. 62 (4) :1178-1181.

Kim, S.H., R.J. Price, M.T. Morrissey, K.G. Field, C.I. Wei, dan H. An. 2002. Histamine Production by Morganella morganii in Mackerel, Albacore, Mahi-mahi, dan Salmon at Various Storage Temperature. J. of Food Science.  67 (4) : 1522-1528.

Rahayu, E.S. 2003. Lactic Acid Bacteria in Fermented Foods in Indonesian Origin. Agritech. 23(2): 75-84.

Rinto. 2006. Aplikasi Bakteri Asam Laktat dalam menghambat pembentukan histamin selama fermentasi peda. Seminar dan Diseminasi Teknologi Pengembangan Hasil Perikanan, Bandar Lampung 4-5 Desember 2006.

Rodriguez-Jerez, J.J., E.I. Lopez-Sabater, A.X. Roig-Sagues, dan M.T. Mora-Ventura. 1994. Histamin, Cadaverin, and Puterscin Forming Bacteria From Ripened Spanish Semipreserved Anchovies. Jour. Food Science. 59 (5):998-1001.

U.S Food and Drug Administration. Juni 2001. Fish and Fisheries Products: Hazards and Controls Guidence (Scombrotoxin Histamine Formation). US FDA.